Reagentsα-Glucosidase (From Sacchar

Reagents
α-Glucosidase (From Saccharomyces cerevisiae, recombinant, 84 U/mg), pyranose oxidase (From Coriolus sp., recombinant; expressed in E. coli, 9.4 U/mg), glucose oxidase (GOx; β-D-glucose: oxygen 1-oxidoreductase, E.C 1.1.3.4, Type II-S: from Aspergillus niger) chitosan (from crab shells, minimum 85% deacetylated), glutaraldehyde solution
(Grade II, 25%), D-glucose, D(+)-mannose, D(+)-galactose, D(+)-xylose,β-lactosewere purchasedfromSigma Chem. Co. (St. Louis, MO, USA), graphite powder (b20 μm, synthetic), multi-walled carbon nanotube (MWCNT; diameter: 110–170 nm, length: 5–9 μm, 90+ %)
were obtained from Aldrich (Dorset, UK), D(−)-fructose, N-acetyl D-glucosamine, maltose monohydrate were purchased from Fluka (Steinheim, Germany). All other chemicals were analytical grade. 1.0 wt.% chitosan solution was prepared by dissolving 1.0 g of
chitosan, flakes into 100 ml of 1.0% acetic acid and stirred for 3 h at room temperature until complete dissolution. The chitosan solution was stored in refrigerator when not in use [29]. To prepare CHIT–CNT solutions, different amounts of MWCNTs were dispersed in CHIT solutions and the blends were treated under an ultrasonic field for 10 min. This CHIT–CNT blend was then stirred for 1 h. During this step, chitosan were adsorbed on the surface of the CNTs thereby acting as polymer cationic surfactants to stabilize the
CNT structures [26].

Results (Thai) 1:

สารΑ-Glucosidase (จาก Saccharomyces cerevisiae ควบรวม 84 U/mg), pyranose oxidase (Coriolus จากเอสพี ควบรวม แสดงใน E. coli, 9.4 U/mg), oxidase กลูโคส (GOx β-D-กลูโคส: ออกซิเจน 1-oxidoreductase, E.C 1.1.3.4, s: II ชนิดจากไนเจอร์ Aspergillus) ไคโตซานจากปูหอย ต่ำสุด 85% deacetylated), glutaraldehyde โซลูชัน(เกรด II, 25%), D-กลูโคส D (+) -mannose, D (+) -กาแล็กโทส D (+) -สาร β-lactosewere purchasedfromSigma บริษัทเคมี. (St. Louis, MO สหรัฐอเมริกา ผงแกรไฟต์ (b20 ไมครอน สังเคราะห์), ท่อนาโนคาร์บอนผนังหลาย (MWCNT เส้นผ่าศูนย์กลาง: 110-170 นิวตันเมตร ความยาว: 5 – 9 ไมครอน 90 + %)ได้รับมาจาก Aldrich (ดอร์เซ็ท UK), D (−) -โมโนไฮเดรต maltose ฟรักโทส N-acetyl D-glucosamine ซื้อจาก Fluka (Steinheim เยอรมนี) สารเคมีอื่น ๆ เกรดวิเคราะห์ โซลูชั่นไคโตซาน wt.% 1.0 ถูกเตรียมยุบ 1.0 กรัมไคโตซาน เกล็ดใน 100 มิลลิลิตรของกรด 1.0% และกวนสำหรับ 3 ชั่วโมงที่อุณหภูมิห้องจนสลายตัวสมบูรณ์ วิธีการแก้ไขปัญหาของไคโตซานถูกเก็บไว้ในตู้เย็นในการ [29] เพื่อเตรียมแก้ไขปัญหาหมอชิต – CNT, MWCNTs จำนวนที่กระจายในหมอชิต และผสมได้รับการรักษาภายใต้ฟิลด์การอัลตราโซนิกสำหรับ 10 นาที ผสมผสานนี้หมอชิต – CNT แล้วกวนสำหรับ 1 ชั่วโมง ในระหว่างขั้นตอนนี้ ไคโตซานถูก adsorbed บนผิวของ CNTs จึงทำหน้าที่เป็นโพลิเมอร์ surfactants cationic เพื่อรักษาเสถียรภาพการโครงสร้าง CNT [26]

Results (Thai) 2:

รีเอเจนต์
α-glucosidase (จาก Saccharomyces cerevisiae, recombinant 84 U / mg) pyranose oxidase (จาก Coriolus SP, recombinant; แสดงออกใน E. coli, 9.4 U / mg.) oxidase กลูโคส (GOX; เบต้า-D-กลูโคส: ออกซิเจน 1 oxidoreductase, EC 1.1.3.4, Type II-S: จากเชื้อรา Aspergillus ไนเจอร์) ไคโตซาน (จากเปลือกหอยปูขั้นต่ำ 85% เซล), การแก้ปัญหา glutaraldehyde
(เกรดสอง 25%), D-กลูโคส, D (+) - mannose, D (+) - กาแลคโต, D (+) - ไซโลส, β-Chem lactosewere purchasedfromSigma จำกัด ( St. Louis, มิสซูรี, สหรัฐอเมริกา), ผงไฟท์ (B20 ไมโครเมตรสังเคราะห์) หลายผนังท่อนาโนคาร์บอน (MWCNT; เส้นผ่าศูนย์กลาง: 110-170 นาโนเมตรยาว: 5-9 ไมโครเมตร 90 +%)
ที่ได้รับจาก ดิช (ดอร์เซตสหราชอาณาจักร), D (-) - ฟรุกโตส N-acetyl D-glucosamine, monohydrate มอลโตสที่ซื้อมาจาก Fluka (Steinheim, เยอรมนี) สารเคมีอื่น ๆ ทั้งหมดเป็นเกรดวิเคราะห์ 1.0 WT. แก้ปัญหา% ไคโตซานถูกจัดทำขึ้นโดยการละลาย 1.0 กรัมของ
ไคโตซานเกล็ดเป็น 100 มล. กรดอะซิติก 1.0% และขยับเป็นเวลา 3 ชั่วโมงที่อุณหภูมิห้องจนตัวสมบูรณ์ วิธีการแก้ปัญหาไคโตซานที่เก็บไว้ในตู้เย็นเมื่อไม่ใช้งาน [29] เพื่อเตรียมความพร้อมการแก้ปัญหา Chit-CNT, จำนวนแตกต่างของ MWCNTs ก็แยกย้ายกันในการแก้ปัญหาและการผสมชิตได้รับการรักษาภายใต้สนามอัลตราโซนิกเป็นเวลา 10 นาที นี้ผสมผสาน Chit-CNT ถูกกวนแล้วเป็นเวลา 1 ชั่วโมง ในระหว่างขั้นตอนนี้ไคโตซานถูกดูดซับบนพื้นผิวของ CNTs จึงทำหน้าที่เป็นแรงตึงผิวประจุบวกลิเมอร์ที่จะรักษาเสถียรภาพของ
โครงสร้าง CNT [26]