2.1. Raw material and processingArt

2.1. Raw material and processing
Artichokes (C. scolymus L. cv. ‘Catanese’) were harvested in
southern Italy (Brindisi area) and transported by car to the Postharvest
Laboratory of the University of Foggia where they were
processed the same day. Processing was performed in a cold room
at 10 ◦C under hygienic conditions (i.e. all bench surface, utensils
and plastic containers were washed and disinfected with sodium
hypochlorite). For each treatment 2 replicates consisting of 16 artichoke
hearts were used.
For each artichoke, the external bracts, leaves and stalk were
removed; heads were then washed in a NaOCl solution (100 ppm
of free chlorine) to eliminate remains of soil and insects. After
washing, head trimming was completed further removing external
greener and tougher bracts (inedible fraction) until only the
receptacle and the more tender, inner bracts, remained. The artichoke
hearts were cut into four lengthwise slices (quarters). Cut
artichokes were placed in a plastic colander and dipped in ice water
containing 100 ppm sodium hypochlorite. The quarters (64 per
replicate and treatment) were then drained and randomly selected
for different treatments/replicates. Artichoke quarters were then
immersed for 1 min at 20 ◦C in a solution containing distilled water
(CTRL), l-cysteine hydrochloride monohydrate 0.028 M (0.5%, w/v)
at natural pH of about 2.2 (CYS-pH2), or l-cysteine hydrochloride
monohydrate at the same concentration and different pH (from 3 to
7) obtained by adding enough NaOH (4 M) and denoted as CYS-pH3,
CYS-pH4, CYS-pH5, CYS-pH6, CYS-pH7. After treatment, quarters
were gently dried by hand with cheesecloth, and groups of 16 quarters
were placed in 4 plastic clamshells at 5 ◦C which were used for
samplings, as shown in Fig. 1.
Colour and overall appearance were evaluated soon after treatment
(day 0) and after 1, 3, 6, and 8 days of storage. For untreated
samples at day 0 and for all samples after 1, 3, and 8 days of storage,
subsamples of 5 quarters per replicate were frozen in liquid
nitrogen and stored at
−80 ◦C for further chemical analyses (Fig. 1).
2.2. Quality evaluations
All quality evaluation procedures were performed at ambient
temperature (about 20 ◦C). The same 11 quarters per replicate were
used for general appearance evaluation and colour measures. The
overall appearance was evaluated by a group of six people. Artichoke
quarters of each replicate were presented to the judges on
a black surface. Quarters were evaluated subjectively on a 5 to 1
scale, where 5 = excellent, no defects; 4 = very good, minor defects;
3 = fair, moderate defects; 2 = poor, major defects; 1 = unedible. A
score of 3 was considered as the limit of marketability and a score
of 2 as the limit of edibility (Amodio et al., 2007).
The colour of artichoke quarters was measured on three different
points on the receptacle. Colour measurements were conducted
by means of a portable spectrophotometer (CM2600, Konica
Minolta Sensing, Osaka, Japan) testing L*a*b* parameters in CIE
scale and calculating Hue angle = arctg (b*/a*). Calibration of the
instrument was performed by means of the measurement of a white
tile (white calibration) and a zero calibration. The following settings
were used: 100% UV; illuminant D65; observer angle 10◦;
measurement area 8 mm.
2.3. Total phenol content and antioxidant activity
Analysis of total phenols and antioxidant activity were performed
on the same extract. Five grams per replicate of artichoke
frozen samples were homogenized with Ultraturrax (IKA, T18 Basic,
USA) in methanol–water solution (80:20) plus 2 mM sodium fluoride
for 1 min, and then centrifuged at 5 ◦C and 12,000
×
g for
10 min. The pellet was discarded and the supernatant was used as
the extract for the total phenol content and the antioxidant activity
determinations.
Total phenols were determined according to the method of
Singleton and Rossi (1965). Each extract (100 L) was mixed with
1.58 mL water, 100 L of Folin–Ciocalteau’s reagent and 300 L
of sodium carbonate solution (200 g/L). After 2 h standing, the
absorbance was read at 575 nm against a blank with a spectrophotometer
(Shimadzu UV-1700l, China). Content of total phenols was
calculated on the basis of the calibration curves of gallic acid, and
was expressed as milligrams of gallic acid equivalents (GAE) per
100 g of fresh weight (mg GAE/100 g FW). All extracts were analysed
three times.
The antioxidant assay was performed following the procedure
described by Brand-Williams et al. (1995), with minor modifications.
100 L of the diluted extract (dilution 1:20) were pipetted
into 0.9 mL of DPPH solution to start the reaction. The absorbance
was read after 20 min at 515 nm. Trolox was used as a standard and
the antioxidant activity was reported in mM of Trolox equivalents
per 100 g of fresh weight (mM TEAC/100 g FW). All extracts were
analysed three times.
2.4. PPO activity
The methodology was adapted from that of Cantos et al. (2002).
Briefly, 5 g of frozen artichoke tissue for each replicate were homogenized
with a Ultraturrax (IKA, T18 Basic, USA) in 20 mL of cold
0.1 M sodium phosphate buffer (pH 7) containing 3% Triton X-
114 (v/v), 1 mM phenylmethanesulfonyl fluoride (PMSF), 5 mM
benzamidine, and 20 mM ascorbic acid. The homogenate was incubated
at 35 ◦C for 15 min, filtrated through three cheesecloth layers,
and then centrifuged at 12,000
×
g for 20 min at 25 ◦C. The pigmentfree
supernatant was used as the enzyme extract.
The standard reaction mixture for determining PPO activity contained
0.580 mL of 50 mM sodium acetate buffer (pH 4.5), 20 L of
enzymatic extract, 0.2 mL of 3 mM 3-methyl-2-benzothiazolinone
hydrazone (MBTH), and 0.2 mL of 2 mM chlorogenic acid. The spectrophotometer
was blanked with the acetate buffer. One unit was
defined as the amount of the enzyme, which caused a change of
0.001 in absorbance measured at 400 nm, in the first 10 s of the
reaction time. All extracts were analysed in triplicate.
2.5. Statistical analysis
A 2-way ANOVA arranged as a Split-Plot design was performed
on mean data, considering treatment as the first factor and time
of storage as the second factor. The most conservative degrees of
freedom were used for time and treatment
×
time interaction. At
each storage evaluation, means were separated using Tukey test
(˛ = 0.05). Statistical linear and exponential regressions between
pH and PPO activity and phenols and PPO activity were tested,
respectively.

Results (Thai) 1:

2.1 ดิบและประมวลผลArtichokes (C. scolymus L. พันธุ์ 'Catanese') ได้เก็บเกี่ยวผลผลิตอิตาลีใต้ (บรินดิซี่ตั้ง) และขนส่ง โดยรถยนต์ไปที่หลังห้องปฏิบัติการมหาวิทยาลัยของ Foggia ที่พวกเขาประมวลผลในวันเดียวกัน ทำการประมวลผลในห้องเย็นที่ 10 ◦C ภายใต้เงื่อนไขสุขอนามัย (เช่นทั้งหมดม้าผิว ช้อนส้อมและบรรจุภัณฑ์พลาสติกล้างทำความสะอาด และฆ่าเชื้อ ด้วยโซเดียมไฮโป) ในแต่ละทรีทเม้นต์ 2 เหมือนกับประกอบด้วยอาร์ทิโชก 16หัวใจใช้สำหรับแต่ละอาร์ทิโชก bracts ภายนอก ใบไม้ และสายได้เอา แล้วถูกล้างหัวในโซลูชัน NaOCl (100 ppmของคลอรีนอิสระ) เพื่อกำจัดของดินและแมลง หลังจากซักผ้า หัวตัดแต่งเสร็จเอาภายนอกเพิ่มเติมbracts หัน และรุนแรง (เศษทาน) เท่านั้นจนกว่าจะรองรับและ bracts ชำระเงินมากขึ้น ภายใน ยังคง อาร์ทิโชกหัวใจถูกตัดเป็นชิ้นตามยาวสี่ (ไตรมาส) ตัดartichokes ถูกวางในลังพลาสติก และจุ่มลงในน้ำแข็งประกอบด้วยฟอก 100 ppm (64 ต่อไตรมาสทำซ้ำและรักษา) แล้ว ระบายออก และสุ่มเลือกสำหรับต่าง ๆ รักษา/คัดลอกตัวเอง อาร์ทิโชกไตรมาสแล้วไปใน 1 นาทีที่ 20 ◦C ในโซลูชันที่ประกอบด้วยน้ำกลั่น(CTRL), l-cysteine ไฮโดรคลอไรด์ monohydrate 0.028 M (0.5%, w/v)ที่ธรรมชาติ pH ประมาณ 2.2 (CYS pH2), หรือ l-cysteine ไฮโดรคลอไรด์monohydrate ที่ความเข้มข้นเดียวกันและค่า pH ที่แตกต่าง (จาก 3 เพื่อ7) ได้ โดยการเพิ่มพอ NaOH (4 เมตร) และตาม CYS pH3CYS pH4, CYS pH5, CYS-pH6, CYS pH7 หลังการรักษา ไตรมาสไม่แห้งด้วยมือกับ cheesecloth และกลุ่ม 16 รอบ เบา ๆไว้ใน clamshells พลาสติก 4 ที่ 5 ◦C ซึ่งใช้สำหรับsamplings ดังที่แสดงใน Fig. 1สีและลักษณะที่ปรากฏโดยรวมที่ประเมินหลังจากการรักษา(วันที่ 0) และหลัง จากวันที่ 1, 3, 6 และ 8 เก็บรักษา สำหรับไม่ถูกรักษาตัวอย่าง ในวันที่ 0 และตัวอย่างทั้งหมดหลังจากวันที่ 1, 3 และ 8 ของการจัดเก็บsubsamples ไตรมาส 5 ต่อจำลองถูกแช่แข็งในของเหลวไนโตรเจน และเก็บไว้ที่◦C −80 สำหรับเติมเคมีวิเคราะห์ (Fig. 1)2.2 การประเมินคุณภาพดำเนินกระบวนการประเมินคุณภาพทั้งหมดที่แวดล้อมอุณหภูมิ (ประมาณ 20 ◦C) 11 รอบ เดียวต่อการจำลองแบบได้ใช้สำหรับการวัดประเมินผลและสีลักษณะทั่วไป ที่ลักษณะโดยรวมที่ประเมิน โดยกลุ่ม 6 คน อาร์ทิโชกไตรมาสของจำลองแต่ละถูกนำเสนอต่อผู้พิพากษาในพื้นผิวเป็นสีดำ ไตรมาสถูกประเมิน subjectively ใน 5 ถึง 1เครื่องชั่งน้ำหนัก 5 =ดีเยี่ยม ข้อบกพร่อง 4 =ดีมาก เล็กน้อยข้อบกพร่อง3 =ปานกลาง เป็นธรรมข้อบกพร่อง 2 =ไม่ดี หลักบกพร่อง 1 = unedible Aคะแนน 3 มีถือเป็นจำนวนคะแนนและสอบ2 เป็นจำนวน edibility (Amodio et al., 2007)สีของไตรอาร์ทิโชกเป็นวัดบนสามแตกต่างกันจุดบนรองรับ ได้ดำเนินการวัดสีโดยการพกพาเครื่องทดสอบกรดด่าง (CM2600 จำหน่ายเครื่องถ่ายเอกสารโอซาก้า ญี่ปุ่น Minolta Sensing) ทดสอบ L * * b * พารามิเตอร์ใน CIEมาตราส่วนและคำนวณมุมเว้ = arctg (b * / ตัว *) แต่งตัวเครื่องมือทำการ โดยวัดเป็นสีขาวกระเบื้อง (ขาวเทียบ) และเทียบศูนย์ การตั้งค่าต่อไปนี้ใช้: UV 100% หลอดไฟ D65 มุมนักการ 10◦พื้นที่วัด 8 mm2.3 การกิจกรรมรวมวางเนื้อหาและสารต้านอนุมูลอิสระดำเนินการวิเคราะห์ของ phenols รวมและกิจกรรมการต้านอนุมูลอิสระในสารสกัดเดียวกัน 5 กรัมต่อการจำลองแบบของอาร์ทิโชกตัวอย่างน้ำแข็งถูก homogenized เป็นกลุ่มกับ Ultraturrax (IKA, T18 พื้นฐานสหรัฐอเมริกา) ในการแก้ปัญหาเมทานอลน้ำ (80:20) บวก 2 มม.โซเดียมฟลูออไรด์ใน 1 นาที และ centrifuged แล้ว ที่ 5 ◦C และ 12000×g สำหรับ10 นาที เม็ดถูกละทิ้ง และ supernatant ถูกใช้เป็นสารสกัดรวมวางเนื้อหาและกิจกรรมการต้านอนุมูลอิสระdeterminationsPhenols รวมได้กำหนดตามวิธีการซิงเกิลตันและ Rossi (1965) สารสกัดแต่ละ (100 L) ถูกผสมกับน้ำมล 1.58, L 100 ของรีเอเจนต์ Folin – Ciocalteau และ 300 Lโซเดียม carbonate โซลูชัน (200 g/L) หลังจากที่ยืน 2 h การabsorbance ที่อ่านที่ 575 nm กับว่างกับเป็นเครื่องทดสอบกรดด่าง(Shimadzu UV - 1700 ลิตร จีน) เนื้อหาของ phenols รวมคำนวณเทียบเส้นโค้งของกรด gallic และถูกแสดงเป็น milligrams เทียบเท่ากรด gallic (GAE) ต่อ100 กรัมน้ำหนักสด (mg GAE/100 g FW) สารสกัดจากทั้งหมดถูก analysedสามครั้งวิเคราะห์สารต้านอนุมูลอิสระได้ดำเนินการตามขั้นตอนอธิบายโดยแบรนด์วิลเลียมส์และ al. (1995), มีการปรับเปลี่ยนเล็กน้อยมี pipetted 100 L แยกแตกออก (เจือจาง 1:20)เป็น mL 0.9 ของ DPPH โซลูชันเริ่มต้นปฏิกิริยา Absorbance ที่ถูกอ่านหลังจาก 20 นาทีที่ 515 nm ใช้เป็นมาตรฐาน Trolox และรายงานกิจกรรมการต้านอนุมูลอิสระในมม.ของ Trolox เทียบเท่าต่อ 100 กรัมน้ำหนักสด (mM TEAC/100 g FW) สารสกัดจากทั้งหมดได้analysed สามครั้ง2.4 กิจกรรม PPOวิธีการดัดแปลงจากของ Cantos et al. (2002)สั้น ๆ 5 กรัมของเนื้อเยื่อแช่แข็งอาร์ทิโชกสำหรับแต่ละการจำลองแบบถูก homogenized เป็นกลุ่มกับ Ultraturrax (IKA, T18 Basic สหรัฐอเมริกา) ใน 20 mL ของเย็น0.1 M โซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 7) มี 3% ไตรตั้น X -114 (v/v), ฟลูออไรด์ phenylmethanesulfonyl 1 มม. (PMSF), 5 mMbenzamidine และกรดแอสคอร์บิค 20 มม. Homogenate ถูก incubatedที่ 35 ◦C สำหรับ 15 นาที filtrated ผ่านสามชั้น cheeseclothแล้ว centrifuged ที่ 12000×กรัมสำหรับ 20 นาทีที่ 25 ◦C Pigmentfreesupernatant ถูกใช้เป็นสารสกัดจากเอนไซม์ผสมปฏิกิริยามาตรฐานในการกำหนดกิจกรรม PPO ประกอบด้วยมล 0.580 50 mM โซเดียม acetate บัฟเฟอร์ (pH 4.5), 20 Lสกัดจากเอนไซม์ในระบบ 0.2 mL ของ 3 มม. 3-methyl-2-benzothiazolinonehydrazone (MBTH), และ 0.2 มิลลิลิตรของกรด chlorogenic 2 มม. ในเครื่องทดสอบกรดด่างไม่ให้ มีบัฟเฟอร์ acetate หนึ่งหน่วยมีกำหนดเป็นจำนวนเอนไซม์ ซึ่งทำให้เกิดการเปลี่ยนแปลงของวัด 0.001 ใน absorbance ที่ 400 nm ใน 10 แรกของการเวลาตอบสนอง สารสกัดจากทั้งหมดถูก analysed ใน triplicate2.5. สถิติวิเคราะห์ทำการวิเคราะห์ความแปรปรวน 2 ทางที่จัดเป็นแบบแผนแยกข้อมูลหมายถึง การพิจารณารักษาเป็นปัจจัยแรกและเวลาเก็บข้อมูลเป็นตัวที่สอง องศาหัวเก่าที่สุดของเสรีภาพใช้สำหรับเวลาและการรักษา×เวลาโต้ตอบ ที่ประเมินผลแต่ละเก็บ หมายถึงถูกแยกโดยใช้การทดสอบของ Tukey(˛ = 0.05) สถิติเชิงเส้น และเนน regressions ระหว่างpH และกิจกรรม PPO และ phenols และ PPO กิจกรรมทดสอบตามลำดับ

Results (Thai) 2:

2.1 วัตถุดิบและการประมวลผล
อาร์ติโช้ค (ค scolymus L. พันธุ์. 'Catanese') ถูกเก็บเกี่ยวใน
ภาคใต้ของอิตาลี (พื้นที่บรินดิซิ) และการขนส่งโดยรถยนต์ไปยังหลังการเก็บเกี่ยว
ห้องปฏิบัติการของมหาวิทยาลัยฟอจจาที่พวกเขาได้รับการ
ประมวลผลในวันเดียวกัน การประมวลผลที่ได้ดำเนินการในห้องเย็น
ที่อุณหภูมิ 10 ◦Cภายใต้เงื่อนไขที่ถูกสุขอนามัย (เช่นม้านั่งพื้นผิวทุกเครื่องใช้
และภาชนะพลาสติกถูกล้างและฆ่าเชื้อด้วยโซเดียม
ไฮโปคลอไรต์) สำหรับการรักษาแต่ละ 2 ซ้ำประกอบด้วย 16 อาติโช๊ค
. หัวใจถูกนำมาใช้
สำหรับอาติโช๊คแต่ละใบประดับภายนอกใบและก้านถูก
ลบออก; หัวถูกล้างแล้วในการแก้ปัญหา NaOCl (100 ส่วนในล้านส่วน
ของคลอรีนฟรี) เพื่อกำจัดซากของดินและแมลง หลังจาก
ซักผ้าการตัดหัวแล้วเสร็จต่อไปลบภายนอก
สีเขียวและใบประดับรุนแรง (กินไม่ได้ส่วน) จนเหลือเพียง
รองรับและซื้อเพิ่มเติม bracts ภายในยังคงอยู่ อาติโช๊ค
หัวใจถูกตัดออกเป็นสี่ชิ้นตามยาว (ไตรมาส) ตัด
อาร์ติโช้คอยู่ในกระชอนพลาสติกและจุ่มลงในน้ำเย็น
ที่มีส่วนผสมของโซเดียมไฮโปคลอไรต์ 100 ส่วนในล้านส่วน ไตรมาส (64 ต่อ
ซ้ำและการรักษา) ได้รับการระบายน้ำแล้วและสุ่มเลือก
สำหรับการรักษาที่แตกต่างกัน / ซ้ำ ไตรมาส Artichoke ถูกแล้ว
แช่เป็นเวลา 1 นาทีที่ 20 ◦Cในการแก้ปัญหาที่มีน้ำกลั่น
(CTRL) monohydrate ไฮโดรคลอไร L-cysteine ​​0.028 เมตร (0.5% w / v)
ที่ pH ธรรมชาติประมาณ 2.2 (CYS-PH2) หรือ ไฮโดรคลอไร L-cysteine
​​monohydrate ที่ความเข้มข้นเดียวกันและค่า pH ที่แตกต่างกัน (ตั้งแต่ 3 ถึง
7) ได้โดยการเพิ่ม NaOH เพียงพอ (4 M) และแสดงเป็น CYS-PH3,
CYS-pH4, CYS-พีเอช 5 CYS-PH6, CYS-pH7 หลังจากการรักษาไตรมาส
แห้งเบา ๆ ด้วยมือกับผ้าและกลุ่มของ 16/4
ถูกวางไว้ใน 4 clamshells พลาสติกที่ 5 ◦Cซึ่งถูกนำมาใช้สำหรับ
กลุ่มตัวอย่างที่แสดงในรูป 1.
สีและลักษณะโดยรวมได้รับการประเมินในเร็ว ๆ นี้หลังการรักษา
(วันที่ 0) และหลังจากที่ 1, 3, 6, 8 และวันของการจัดเก็บข้อมูล ได้รับการรักษาสำหรับ
ตัวอย่างในวันที่ 0 และสำหรับตัวอย่างทั้งหมดหลังวันที่ 1, 3 และ 8 วันของการจัดเก็บข้อมูล
ของ subsamples 5/4 ต่อซ้ำถูกแช่แข็งในของเหลว
ไนโตรเจนและเก็บไว้ที่
-80 ◦Cสำหรับการวิเคราะห์สารเคมีต่อไป (รูปที่ 1)..
2.2 . การประเมินผลที่มีคุณภาพ
ขั้นตอนการประเมินผลที่มีคุณภาพทั้งหมดถูกดำเนินการในรอบ
อุณหภูมิ (ประมาณ 20 ◦C) เช่นเดียวกับที่ 11/4 ต่อซ้ำถูก
นำมาใช้สำหรับการประเมินผลลักษณะทั่วไปสีและมาตรการ
ลักษณะโดยรวมได้รับการประเมินโดยกลุ่มของหกคน อาร์ติโชค
ในสี่ของแต่ละซ้ำถูกนำเสนอให้ผู้พิพากษาใน
พื้นผิวสีดำ Quarters จิตใจได้รับการประเมินใน 5-1
ระดับที่ 5 = ดีเยี่ยมไม่มีข้อบกพร่อง; 4 = ดีมากข้อบกพร่องเล็ก ๆ น้อย ๆ ;
3 = ยุติธรรมข้อบกพร่องในระดับปานกลาง 2 = ยากจนข้อบกพร่องที่สำคัญ 1 = unedible
คะแนนจาก 3 ได้รับการพิจารณาเป็นขีด จำกัด ของตลาดและคะแนน
จาก 2 เป็นขีด จำกัด ของการคุยโว (Amodio et al., 2007).
สีของไตรมาสพันธุ์ไม้ชนิดหนึ่งได้รับการวัดแตกต่างกันสาม
จุดบนภาชนะ วัดสีได้ดำเนินการ
โดยวิธีการดูดกลืนแสงแบบพกพา (CM2600, Konica
Minolta Sensing, โอซาก้าประเทศญี่ปุ่น) การทดสอบ L * * * * * * * * * ขพารามิเตอร์ใน CIE
ขนาดและการคำนวณมุมเว้ = arctg (b * / *) การสอบเทียบ
เครื่องมือที่ได้รับการดำเนินการโดยวิธีการของการวัดสีขาว
กระเบื้อง (สอบเทียบสีขาว) และศูนย์สอบเทียบ การตั้งค่าดังต่อไปนี้
ถูกนำมาใช้: รังสียูวี 100%; สว่าง D65; มุมสังเกตการณ์10◦;
พื้นที่วัด 8 มม.
2.3 เนื้อหาทั้งหมดฟีนอลและสารต้านอนุมูลอิสระ
วิเคราะห์ฟีนอลทั้งหมดและสารต้านอนุมูลอิสระได้ดำเนินการ
เกี่ยวกับสารสกัดเดียวกัน ห้ากรัมต่อซ้ำของพันธุ์ไม้ชนิดหนึ่ง
ตัวอย่างถูกแช่แข็งหดหายกับ UltraTurrax (IKA, T18 พื้นฐาน,
USA) ในสารละลายเมทานอลน้ำ (80:20) บวก 2 มิลลิฟลูออไรโซเดียม
เป็นเวลา 1 นาทีและปั่นแล้วที่ 5 ◦Cและ 12,000
×
กรัม สำหรับ
10 นาที เม็ดถูกทิ้งและสารละลายที่ใช้เป็น
สารสกัดจากเนื้อหาทั้งหมดฟีนอลและสารต้านอนุมูลอิสระ
หาความ.
ฟีนอลทั้งหมดได้รับการพิจารณาตามวิธีการของ
ซิงเกิลและรอสซี (1965) แต่ละสารสกัด (100 ลิตร) ผสมกับ
น้ำ 1.58 มล, 100 ลิตรน้ำยา Folin-Ciocalteau และ 300? L
ของการแก้ปัญหาโซเดียมคาร์บอเนต (200 กรัม / ลิตร) หลังจากนั้น 2 ชั่วโมงยืน
ดูดกลืนแสงได้อ่านที่ 575 นาโนเมตรกับว่างเปล่าที่มีสเปก
(Shimadzu UV-1700L, จีน) เนื้อหาของฟีนอลทั้งหมดได้รับการ
คำนวณบนพื้นฐานของเส้นโค้งการสอบเทียบของกรดแกลลิและ
ได้รับการแสดงเป็นมิลลิกรัมเทียบเท่ากรดแกลลิ (GAE) ต่อ
100 กรัมของน้ำหนักสด (มก GAE / 100 กรัม FW) สารสกัดจากทั้งหมดที่ได้มาวิเคราะห์
สามครั้ง.
การทดสอบสารต้านอนุมูลอิสระที่ได้ดำเนินการตามขั้นตอน
ที่อธิบายไว้โดยแบรนด์วิลเลียมส์และคณะ (1995) ที่มีการปรับเปลี่ยนเล็กน้อย.
100 ลิตรสารสกัดเจือจาง (เจือจาง 1:20) ถูกปิเปต
เป็น 0.9 มิลลิลิตรของสารละลาย DPPH ที่จะเริ่มต้นการเกิดปฏิกิริยา การดูดกลืนแสง
ได้อ่านหลังจาก 20 นาทีที่ 515 นาโนเมตร Trolox ถูกใช้เป็นมาตรฐานและ
สารต้านอนุมูลอิสระที่มีการรายงานในมิลลิเทียบเท่า Trolox
ต่อ 100 กรัมของน้ำหนักสด (มม TEAC / 100 กรัม FW) สารสกัดจากทั้งหมดถูก
วิเคราะห์สามครั้ง.
2.4 กิจกรรม PPO
วิธีการที่ได้รับการดัดแปลงมาจากโคลงและคณะ (2002).
สั้น ๆ 5 กรัมของเนื้อเยื่อพันธุ์ไม้ชนิดหนึ่งแช่แข็งซ้ำแต่ละหดหาย
กับ UltraTurrax (IKA, T18 พื้นฐาน, สหรัฐอเมริกา) ในปริมาณ 20 มลเย็น
0.1 M ฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 7) ที่มี 3% Triton X-
114 ( v / v), 1 มิลลิฟลูออไร phenylmethanesulfonyl (PMSF) 5 มิลลิ
benzamidine และ 20 มมวิตามินซี homogenate ถูกบ่ม
ที่อุณหภูมิ 35 ◦Cเป็นเวลา 15 นาที, กรองผ่านสามชั้นผ้า,
และปั่นแล้วที่ 12,000
×
กรัมเป็นเวลา 20 นาทีที่อุณหภูมิ 25 ◦C pigmentfree
ใสถูกใช้เป็นสารสกัดจากเอนไซม์.
ผสมปฏิกิริยามาตรฐานสำหรับการกำหนดกิจกรรม PPO มี
0.580 มิลลิลิตร 50 มมโซเดียมอะซิเตทบัฟเฟอร์ (pH 4.5), 20? L ของ
สารสกัดจากเอนไซม์, 0.2 มิลลิลิตร 3 มม 3-methyl-2- benzothiazolinone
hydrazone (MBTh ถือ) และ 0.2 มิลลิลิตร 2 มิลลิกรด chlorogenic สเปก
คอมพ์ถูกกับบัฟเฟอร์อะซิเตท หน่วยหนึ่งได้ถูก
กำหนดให้เป็นปริมาณของเอนไซม์ที่ก่อให้เกิดการเปลี่ยนแปลง
ในการดูดกลืนแสง 0.001 วัดที่ 400 นาโนเมตรใน 10 อันดับแรกของ
เวลาการเกิดปฏิกิริยา สารสกัดจากทั้งหมดที่ได้มาวิเคราะห์ในเพิ่มขึ้นสามเท่า.
2.5 การวิเคราะห์ทางสถิติ
2-way ANOVA จัดเป็นการออกแบบแยกแปลงได้ดำเนินการ
เกี่ยวกับข้อมูลค่าเฉลี่ยพิจารณาการรักษาเป็นปัจจัยแรกและเวลา
ของการจัดเก็บเป็นปัจจัยที่สอง องศาอนุรักษ์นิยมมากที่สุดของ
เสรีภาพถูกนำมาใช้สำหรับเวลาและการรักษา
×
ปฏิสัมพันธ์เวลา ใน
การประเมินผลการจัดเก็บแต่ละวิธีที่ถูกแยกออกใช้การทดสอบ Tukey
(˛ = 0.05) สถิติการถดถอยเชิงเส้นและชี้แจงระหว่าง
ค่า pH และกิจกรรม PPO และฟีนอลและกิจกรรม PPO ถูกทดสอบ
ตามลำดับ

Results (Thai) 3:

2.1 . วัตถุดิบและการประมวลผลที่มี scolymus
( C . L . cv . ' ' ) ถูกเก็บเกี่ยวใน Catanese
อิตาลีตอนใต้ ( พื้นที่บรินดีซี ) และเดินทางโดยรถยนต์ไปยังห้องปฏิบัติการของมหาวิทยาลัยจาก

ที่พวกเขาดำเนินการในวันเดียวกัน ประมวลผลแสดงในห้องเย็น
ที่ 10 ◦ C ภายใต้เงื่อนไขสุขอนามัย ( เช่นม้านั่งพื้นผิวเครื่องใช้
และภาชนะพลาสติก ล้างและฆ่าเชื้อด้วยสารละลายโซเดียมไฮโปคลอไรท์
) สำหรับการรักษาแต่ละ 2 แบบประกอบด้วย 16 หัวใจอาติโช๊ค

สำหรับแต่ละใช้ โช๊ค , ใบภายนอก ใบและก้านมี
ออก หัว แล้วล้างในสารละลายไม่ระบุ ( 100 ppm
คลอรีนฟรี ) เพื่อขจัดซากดินและแมลง หลังจาก
ซักหัวตัดเสร็จต่อไปเอาภายนอก
ไส้และรุนแรงใบ ( กินไม่ได้เศษส่วน ) จนกระทั่ง
รับและซื้อเพิ่มเติมภายในใบยังคง . อาติโช๊คหัวใจถูกหั่นตามยาว
4 ชิ้น ( 4 ) ตัด
ที่มีอยู่ในกระชอนพลาสติกและจุ่มลงในน้ำผสมน้ำแข็ง
100 ppm โซเดียมไฮโป . ไตรมาส ( 64 /
สร้างและรักษา ) เป็นเนื้อและสุ่ม / ซ้ำ
สำหรับการรักษาที่แตกต่างกัน ส่วนโช๊คแล้ว
แช่นาน 1 นาทีที่ 20 ◦องศาเซลเซียสในสารละลายที่มีน้ำ
( Ctrl ) , แอลซีสเทอีนไฮโดรคลอไรด์ monohydrate 8.5 เมตร ( 0.5 % W / V )
ที่ pH ธรรมชาติประมาณ 2.2 ( cys-ph2 ) หรือแอลซิสเตอีน ไฮโดรคลอไรด์
monohydrate ที่ความเข้มข้นเดียวกันและต่าง ( จาก 3 อ
7 ) ได้โดยการเพิ่ม NaOH พอ ( 4 เมตร ) และแสดงเป็น cys-ph3
cys-ph4 cys-ph5 cys-ph6 , , , , cys-ph7 . หลังการรักษา ไตรมาส
อยู่เบา ๆด้วยผ้าแห้งและกลุ่ม 16 ไตรมาส
อยู่ใน 4 clamshells พลาสติก 5 ◦ C ซึ่งใช้สำหรับ
ครั้ง ดังแสดงในรูปที่ 1 .
สีและลักษณะโดยรวมมีการประเมินหลังจากการรักษา
( วันที่ 0 ) และหลัง 1 , 3 , 6 ,และ 8 วันของการจัดเก็บ อย่างดิบ
วันที่ 0 และตัวอย่างทั้งหมดหลังจาก 1 , 3 และ 8 วัน ของกระเป๋า ,
subsamples 5 ไตรมาส ต่อ ซ้ำถูกแช่แข็งในไนโตรเจนเหลว

และเก็บไว้ที่− 80 ◦ C เคมีสำหรับการวิเคราะห์ต่อไป ( รูปที่ 1 )
2 . การประเมินคุณภาพ
ทุกขั้นตอนการประเมินคุณภาพการวิจัยที่อุณหภูมิห้อง
( ประมาณ 20 ◦ C ) เดียวกัน 11 ไตรมาสต่อทำซ้ำได้
การประเมินลักษณะทั่วไปและการวัดสี
ลักษณะโดยรวมที่ประเมินโดยกลุ่มของหกคน อาร์ติโช๊ค
ไตรมาสของแต่ละจําลองนำเสนอให้ผู้พิพากษาใน
พื้นผิวสีดำ ไตรมาสจำนวน 1
5 อย่างในระดับที่ 5 = ดีมาก , ไม่มีข้อบกพร่อง ; 4 = ดีมาก , ข้อบกพร่องเล็กน้อย ;
3 = พอใช้ ปานกลาง 2 = ไม่ดีข้อบกพร่องข้อบกพร่อง ; สาขา ; 1 = แก้ไขไม่ได้ .
เป็น3 คะแนนก็ถือว่าเป็นขีด จำกัด ของการทำตลาด และคะแนน
2 เป็นขีด จำกัด ของอาหาร ( amodio et al . , 2007 ) .
สีโช๊คไตรมาส วัดสามจุดที่แตกต่าง
ในภาชนะ . การวัดสีที่เกิด
โดยวิธีการของ Spectrophotometer แบบพกพา ( cm2600 , Konica Minolta -
, โอซาก้า , ญี่ปุ่น ) ทดสอบ L * a * b *
: พารามิเตอร์ขนาดและการ arctg มุม = เว้ ( B * / * ) การสอบเทียบของเครื่องมือโดยใช้
หมายถึงการวัดกระเบื้องสีขาว
( สอบเทียบสีขาว ) และศูนย์สอบเทียบ ต่อไปนี้การตั้งค่า
ใช้ : 100% UV ; ปริมาณแสงสว่าง D65 ; มุมสังเกตการณ์ 10 ◦ ;
การวัดพื้นที่ 8 mm .
2.3 ปริมาณฟีนอลรวมและฤทธิ์ต้าน
การวิเคราะห์กิจกรรมของฟีนอลและการรวมสารต้านอนุมูลอิสระ
บนแยกเหมือนกัน 5 กรัมต่อทำซ้ำของโช๊ค
แช่แข็งจำนวนโฮโมกับ ultraturrax ( Ika t18 ขั้นพื้นฐาน
, USA ) ในเมทานอลและน้ำ ( 80 ) โซลูชั่นพลัส 2 มิลลิเมตรโซเดียมฟลูออไรด์
1 นาที และระดับที่ 5 ◦ C และ 8 ×
g

10 นาทีที่ถูกทิ้ง และนำเม็ด ใช้
สารสกัดสำหรับเนื้อหาฟีนอลทั้งหมด และสารต้านอนุมูลอิสระ รวมทั้งกิจกรรม
.
ฟีนอลทั้งหมดถูกกำหนดตามวิธีการของ
Singleton และรอสซี่ ( 1965 ) แต่ละแทรค ( 100  ลิตร ) ผสมกับ
1.58 น้ำ 100  L ของ folin – ciocalteau รีเอเจนต์และ 300  L
ของสารละลายโซเดียมคาร์บอเนต ( 200 กรัม / ลิตร ) หลังจากยืน 2 H ,
ได้อ่านที่คุณ nm กับค่าว่างด้วย Spectrophotometer
( Shimadzu uv-1700l , จีน ) เนื้อหาของฟีนอลรวม
คำนวณบนพื้นฐานของเส้นโค้งสอบเทียบของเพิ่มขึ้นและ
ถูกแสดงเป็นมิลลิกรัมของกรดแกลลิคเทียบเท่า ( เก ) ต่อ
ของน้ำหนักสด 100 กรัม ( mg / 100 g FW เก ) สารสกัดทั้งหมดวิเคราะห์

สามครั้ง( สารต้านอนุมูลอิสระมีการปฏิบัติตามกระบวนการ
อธิบายโดยแบรนด์วิลเลียมส์ et al . ( 1995 ) ที่มีการปรับเปลี่ยนเล็กน้อย
100  ล. เจือจางสารสกัดเจือจาง 1 : 20 ) pipetted
เป็น 0.9 กรัม dpph โซลูชั่นเพื่อเริ่มต้นปฏิกิริยา น
ได้อ่านหลังจาก 20 นาทีที่ 515 nm . สาร ที่ใช้เป็นมาตรฐานและ
สารต้านอนุมูลอิสระถูกรายงานในมม. เทียบเท่า
สารต่อน้ำหนักสด 100 กรัม ( อืม Teac / 100 g FW ) สารสกัดทั้งหมดเป็นจำนวนสามครั้ง
.
2.4 . กิจกรรมของเอนไซม์ PPO
ระเบียบวิธีวิจัยที่ถูกดัดแปลงจากของโคลง et al . ( 2545 ) .
สั้น 5 กรัมเนื้อเยื่อแช่แข็งอาติโช๊คแต่ละเลียนแบบเป็นโฮโม
กับ ultraturrax ( Ika t18 , พื้นฐาน , USA ) 20 มิลลิลิตร เย็น
0.1 โมลาร์โซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7 ) ที่มี 3 % Triton x -
114 ( v / v )ฟลูออไรด์ phenylmethanesulfonyl 1 มม. ( PMSF )
benzamidine 5 มม. และ 20 มม. และกรดแอสคอร์บิค มีปริมาณถูกบ่ม
ที่ 35 ◦ C เป็นเวลา 15 นาที ผลิตผ้าทั้ง 3 ชั้น และระดับที่ 12000 แล้ว

×
G สำหรับ 20 นาทีที่ 25 ◦ C pigmentfree
นำใช้เป็นส่วนผสมของเอนไซม์สกัด
มาตรฐานเพื่อกำหนดกิจกรรมของเอนไซม์ PPO ที่มีอยู่
0580 ml 50 มิลลิเมตรโซเดียมอะซิเตตบัฟเฟอร์ pH 4.5 ) , 20  l
สารสกัดเอนไซม์จาก 0.2 มิลลิลิตร 3-methyl-2-benzothiazolinone
3 มม. ( mbth ) และ 0.2 มิลลิลิตรของกรด chlorogenic 2 mm . ส่วนวัสดุ
ได้หายสาบสูญไปด้วยอะซิเตตบัฟเฟอร์ หนึ่งหน่วยคือ
หมายถึงปริมาณของเอนไซม์ ซึ่งเกิดจากการเปลี่ยนแปลงของ
0.001 ในการดูดกลืนแสงวัดที่ 400 nm ใน 10 อันดับแรกของ
ปฏิกิริยาเวลาสารสกัดทั้งหมดวิเคราะห์ทั้งสามใบ
2.5 การวิเคราะห์ทางสถิติการวิเคราะห์ความแปรปรวน
อลได้จัดเป็น Split Plot Design )
ข้อมูลหมายถึง การพิจารณาการรักษาเป็นปัจจัยแรกที่และเวลา
ของกระเป๋าเป็นปัจจัย 2 องศาของเสรีภาพอนุรักษ์นิยมที่สุด
ใช้เวลาและการรักษา

×เวลาปฏิสัมพันธ์ ที่
แต่ละกระเป๋าประเมินผล หมายถึง แยกกันใช้
ทดสอบ ( ˛ = 0.05 )สถิติเชิงเส้นและแบบสมการถดถอยระหว่าง
กิจกรรมกิจกรรม และ PPO และฟีนอลและ PPO ทดสอบ
ตามลำดับ